• 常见动物实验中实验动物的选择

      一、药理学研究中的选择1、临床药物代谢动物学研究:首选动物及性别,应尽量与药效量或毒理学研究所用动物一致。药物动力学参数测定:最好使用犬、猴子等大动物,可在同一动物上多次采样。药物分布实验:大、小鼠较方便。药物排泄试验:一般首选大鼠,胆汁采集可在乙醚麻醉,胆管插管引流。2、一般药理研究主要药效作用以外广泛药理作用的研究。动物:小鼠、大鼠、猫、犬等性别不限。3、作用于神经系统的药物研究:促智药:成年

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    • 家兔和豚鼠心脏取血法

      将兔仰卧固定在手术台上,把左侧胸部相当于心脏的部位的被毛剪去,用碘伏、酒精消毒皮肤。实验者用左手触摸左侧第3-4肋间,选择心跳最明显处作穿刺。一般由胸骨左缘外3mm处将注射针头插入第三肋间隙。穿刺时最好用左手触诊心跳,在触诊的配合下穿刺。 经6-7天后,可以重复进行心脏穿刺术。家兔一次可采取全血量的1/6-1/5。

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    • 大小取血法

      大小鼠断头取血法用大鼠断头器或粗剪刀在鼠颈部将鼠头剪掉,实验者立即将鼠颈向下,提起动物,对准准备好的容器,鼠血即可从颈部滴入容器内。大小鼠尾静脉方法将鼠尾在温水中浸泡2分钟,待静脉充分充血后,用剪刀剪去尾尖或挑取尾静脉,尾静脉知即可流出,用手轻轻从尾根部向尾尖部挤几下,可以取到数滴血。大小鼠眼眶动脉和静脉取血用左手抓住鼠,拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧,使鼠眼球突出。右手取一无钩弯小镊,在鼠右侧眼

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    • Y形迷宫电刺激实验流程

      以MG-3Y形迷宫为例1) 实验开始时,让大鼠在起步区(大鼠开始所在的臂) 适应3~5 min ,然后按顺时针方向变换安全区与电击区的位置,2) 当安全区信号灯亮起5秒后,即给起步区、非安全区加电,而安全区不加电,当大鼠被电击后,跑至安全区后结束一次训练。3) 上一次训练结束后原来的安全区5秒后的变为下一次训练的起步区,重复上一训练过程。直到5分钟结束,得到5分钟内训练次数,正确次数、潜伏期、错误

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    • 小动物跑台运动实验规程

      1、购进的大小鼠首先在实验室进行一周左右的生活环境的适应性饲养?! ?、第二周进行跑台适应性运动训练  通常跑台慢速运动,设定速度为15-20米/分钟;把鼠放入舱内一分钟后,施加电刺激,刺激电压调至65伏左右,刺激频率随意?! ⌒∈笫艿绱碳ず蠡崧砩咸弦贫芴ㄌ?朝跑台相反方向移动。如果跳到台面上的鼠不跑,会被传送带带入电刺激区再次受电刺激击打,它又会跳上传送带奔跑?! ”寂苎盗访刻煲淮?每次十

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    • 恐惧和焦虑的神经生物学研究

      害怕是面临威胁性情境时的情绪反应,当害怕显著超过了应有的程度时称为恐惧;在无现实威胁时,感到的害怕或担心则称为焦虑。过去曾经认为情绪很难用神经科学的方法探讨,而现在情绪已成为神经科学的一个热门研究课题。对恐惧和焦虑的神经通路及发生机制的研究已获得很大进展。这类研究是在经典条件反射的基础上,采用了新的研究方法,例如,用微电凝和微量药物注射,引起某一特殊神经结构的限局性损害,然后观察其相关的行为效应,

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    • 实验动物给药量的确定

      在观察一个药物的作用时,应该给动物多在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。剂量太小,作用不明显,剂量太大,又可能引起动物中毒致死,可以按下述方法确定剂量: 1.先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量,或取致死量的若干分之一为应用剂量,一般可取1/10-1/5?!?.植物药粗制剂的剂量多按生药折算?!?.化学**可参考化学结构相似的已知药物,特别是化学结构和作用都相似的药物

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    • 生理学实验室常用实验仪器

      (一)电极1.普通电极:多用银丝或不锈钢丝制成,一般将一条或两条金属丝镶嵌在有机玻璃或硬塑框套内,刺激端裸露,作为细胞外刺激用。2.?;さ缂罕;さ缂木悼蛱自诖碳ざ送淝晒匙?,金属丝包埋其中,金属丝仅保留沟内一面裸露,以便施加刺激时,?;て渲芪У淖橹馐艽碳?。3.锌铜弓:在生理学实验中,锌铜弓是检验标本机能活性最常用而简易的刺激器。由铜片和锌片两种金属制成。最早由Calvani所创造,故称Ca

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