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常见动物实验中实验动物的选择
一、药理学研究中的选择1、临床药物代谢动物学研究：首选动物及性别，应尽量与药效量或毒理学研究所用动物一致。药物动力学参数测定：最好使用犬、猴子等大动物，可在同一动物上多次采样。药物分布实验：大、小鼠较方便。药物排泄试验：一般首选大鼠，胆汁采集可在乙醚麻醉，胆管插管引流。2、一般药理研究主要药效作用以外广泛药理作用的研究。动物：小鼠、大鼠、猫、犬等性别不限。3、作用于神经系统的药物研究：促智药：成年
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家兔和豚鼠心脏取血法
将兔仰卧固定在手术台上，把左侧胸部相当于心脏的部位的被毛剪去，用碘伏、酒精消毒皮肤。实验者用左手触摸左侧第3-4肋间，选择心跳最明显处作穿刺。一般由胸骨左缘外3mm处将注射针头插入第三肋间隙。穿刺时最好用左手触诊心跳，在触诊的配合下穿刺。 经6-7天后，可以重复进行心脏穿刺术。家兔一次可采取全血量的1/6-1/5。
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大小取血法
大小鼠断头取血法用大鼠断头器或粗剪刀在鼠颈部将鼠头剪掉，实验者立即将鼠颈向下，提起动物，对准准备好的容器，鼠血即可从颈部滴入容器内。大小鼠尾静脉方法将鼠尾在温水中浸泡2分钟，待静脉充分充血后，用剪刀剪去尾尖或挑取尾静脉，尾静脉知即可流出，用手轻轻从尾根部向尾尖部挤几下，可以取到数滴血。大小鼠眼眶动脉和静脉取血用左手抓住鼠，拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧，使鼠眼球突出。右手取一无钩弯小镊，在鼠右侧眼
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Y形迷宫电刺激实验流程
以MG-3Y形迷宫为例1) 实验开始时,让大鼠在起步区(大鼠开始所在的臂) 适应3～5 min ,然后按顺时针方向变换安全区与电击区的位置,2) 当安全区信号灯亮起5秒后，即给起步区、非安全区加电，而安全区不加电，当大鼠被电击后，跑至安全区后结束一次训练。3) 上一次训练结束后原来的安全区5秒后的变为下一次训练的起步区，重复上一训练过程。直到5分钟结束，得到5分钟内训练次数，正确次数、潜伏期、错误
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小动物跑台运动实验规程
1、购进的大小鼠首先在实验室进行一周左右的生活环境的适应性饲养?！ ?、第二周进行跑台适应性运动训练 通常跑台慢速运动,设定速度为15-20米/分钟;把鼠放入舱内一分钟后,施加电刺激,刺激电压调至65伏左右,刺激频率随意?！ ⌒∈笫艿绱碳ず蠡崧砩咸弦贫芴ㄌ?朝跑台相反方向移动。如果跳到台面上的鼠不跑,会被传送带带入电刺激区再次受电刺激击打,它又会跳上传送带奔跑?！ ”寂苎盗访刻煲淮?每次十
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恐惧和焦虑的神经生物学研究
害怕是面临威胁性情境时的情绪反应，当害怕显著超过了应有的程度时称为恐惧；在无现实威胁时，感到的害怕或担心则称为焦虑。过去曾经认为情绪很难用神经科学的方法探讨，而现在情绪已成为神经科学的一个热门研究课题。对恐惧和焦虑的神经通路及发生机制的研究已获得很大进展。这类研究是在经典条件反射的基础上，采用了新的研究方法，例如，用微电凝和微量药物注射，引起某一特殊神经结构的限局性损害，然后观察其相关的行为效应，
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实验动物给药量的确定
在观察一个药物的作用时，应该给动物多在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死，可以按下述方法确定剂量： 1．先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一为应用剂量，一般可取1/10-1/5?！?．植物药粗制剂的剂量多按生药折算?！?．化学**可参考化学结构相似的已知药物，特别是化学结构和作用都相似的药物
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生理学实验室常用实验仪器
（一）电极1．普通电极：多用银丝或不锈钢丝制成，一般将一条或两条金属丝镶嵌在有机玻璃或硬塑框套内，刺激端裸露，作为细胞外刺激用。2．?；さ缂罕；さ缂木悼蛱自诖碳ざ送淝晒匙?，金属丝包埋其中，金属丝仅保留沟内一面裸露，以便施加刺激时，?；て渲芪У淖橹馐艽碳?。3．锌铜弓：在生理学实验中，锌铜弓是检验标本机能活性最常用而简易的刺激器。由铜片和锌片两种金属制成。最早由Calvani所创造，故称Ca
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